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高效毛細(xì)管區(qū)帶電泳色譜儀分析技術(shù) 
(發(fā)布日期:2016-5-16 11:12:26) 來源:
 
   
 
高效毛細(xì)管區(qū)帶電泳色譜儀(CZE)又稱自由溶液區(qū)帶電泳儀,整個系統(tǒng)采用同一種緩沖液充滿,以毛細(xì)管為分離通道,以高壓直流電場為驅(qū)動力,利用荷電粒子之間的淌度差異進(jìn)行分離。
一、工作原理:
CZE中,粒子的電荷性質(zhì)不同,電泳方向不同;粒子的電荷數(shù)量不同,電泳速度不同;粒子的分子量不同,電泳速度不同。在毛細(xì)管中,由于電滲流的存在,所有粒子都隨電滲流一起向負(fù)極遷移,電滲流速度約是一般離子電泳速度的5~7倍。各種電性粒子在毛細(xì)管中的遷移速度分別為:
1、陽離子:vap = veo+ vep,陽離子電泳方向與電滲流方向一致。
2、陰離子:vap = veo-vep,陰離子電泳方向與電滲流方向相反。
3、中性粒子:vap = veo,中性粒子運動方向與電滲流方向一致。
當(dāng)樣品從陽極端注入毛細(xì)管時,不同電性的粒子將按不同速度向負(fù)極遷移,從負(fù)極端先后流出毛細(xì)管,出峰順序依次是陽離子、中性粒子和陰離子。中性粒子無電泳現(xiàn)象,隨電滲流同行,在陽離子后流出,但不同結(jié)構(gòu)的中性粒子無法相互分離(電泳圖上是一個峰)。
電滲流在CZE中起著極其重要的作用:
1、電滲流具有象HPLC中泵一樣的作用,推動粒子前進(jìn),加上不同粒子電泳速度和方向的差異,完成陽離子、陰離子和中性粒子的分離。
2、改變電滲流速度的大小和方向,可改變分離效率和選擇性。這是CZE優(yōu)化分離的重要因素。
3、電滲流速度的微小變化會影響分離結(jié)果的重現(xiàn)性(遷移時間和峰面積)。
二、特點:
1、毛細(xì)管不涂敷任何固定液。
2、結(jié)構(gòu)簡單,操作方便。
3、不能分離電中性組分,因為電中性組分的淌度差為零。
4、不能分離質(zhì)荷比相近的組分,如蛋白質(zhì)-SDS絡(luò)合物。
三、定性和定量分析:
1、定性依據(jù):不同組分的遷移時間不同。
2、定量依據(jù):電泳峰面積或峰高。
四、操作條件:
CZE操作條件包括緩沖液、添加劑、分離電壓和分離溫度等選擇。
1、緩沖液:
CZE分離過程在緩沖液中進(jìn)行,緩沖液的選擇直接影響粒子的遷移和分離。
配制緩沖液時,必須使用高純蒸餾水和試劑。使用前要用0.45μm濾膜過濾以除去顆粒等。
(1)選擇緩沖液應(yīng)遵循的條件:
1)在所選擇的pH范圍內(nèi)有很好的緩沖容量。
2)在檢測波長處無吸收或吸收值低。
3)為達(dá)到有效的進(jìn)樣和合適的電泳淌度,緩沖液pH值至少與被測組分的等電點相差l個pH單位。
4)自身淌度低,即分子大而荷電小,以減少電流的產(chǎn)生。
5)只要條件允許,盡可能采用酸性緩沖液。在低pH值下,吸附和電滲流都很小,毛細(xì)管涂層的壽命較長。
6)與毛細(xì)管種類匹配,涂層毛細(xì)管只能在一定pH范圍內(nèi)使用。
(2)緩沖液pH值的選擇:
1)緩沖液pH值的選擇與樣品性質(zhì)有關(guān)。
①通常酸性組分選擇在堿性條件下分離。
②通常堿性組分選擇在酸性條件下分離。
③蛋白質(zhì)、多肽和氨基酸等兩性物質(zhì)可選酸性(pH = 2)或堿性(pH>9)分離介質(zhì)。
④糖類樣品通常在pH = 9~11能獲得最優(yōu)分離。
⑤羧酸或其它樣品多在pH = 5~9選擇分離條件。
2)緩沖液pH值的選擇和毛細(xì)管種類有關(guān)。
很多涂層毛細(xì)管只能在一定pH范圍內(nèi)使用,如聚丙烯酰胺涂層毛細(xì)管只能在pH = 4~9使用,否則涂層易水解失效。
3)在相同pH下,不同緩沖液的分離效果可能相差很大。
一般來說,能與樣品發(fā)生相互作用的試劑可能是最好的。如分離糖類和DNA等分子時應(yīng)優(yōu)先使用硼酸鹽緩沖液,因為硼酸根能與糖羥基形成配位鍵,增加糖的負(fù)電荷和分離度。硼酸鹽緩沖液也適用于分離其它含鄰羥基和多羥基的化合物。
4)為了選擇合適的pH值,需要用pH調(diào)節(jié)劑調(diào)整介質(zhì)的酸堿性。
由于多數(shù)緩沖試劑是酸性物質(zhì)如磷酸,所以pH調(diào)節(jié)劑主要是堿類。常用pH調(diào)節(jié)劑有NaOH、KOH和Tris等。也可用胺和醇胺等有機(jī)堿如乙醇胺和乙二胺。如果緩沖試劑為堿類,可用酸作為調(diào)節(jié)劑,盡量使用弱酸如H3PO4
緩沖試劑和調(diào)節(jié)劑的濃度對改善分離、抑制吸附和控制焦耳熱等都有影響。一般緩沖試劑的濃度在10~200mmol/L,有時為了抑制蛋白質(zhì)等的吸附作用,濃度可高達(dá)500mmol/L(此時應(yīng)減少分離電壓)。電導(dǎo)率大的緩沖試劑如磷酸鹽和硼酸鹽等的濃度一般在20mmol/L,電導(dǎo)率小的緩沖試劑如硼酸的濃度可在100mmol/L以上。
2、添加劑:
如果緩沖液經(jīng)各種參數(shù)優(yōu)化后仍無法給出良好的分離結(jié)果,可加入添加劑以改善分離。常用添加劑有:
(1)無機(jī)電解質(zhì):NaCl和KCl等。
(2)有機(jī)溶劑:甲醇和乙腈等。
(3)非電解質(zhì)高分子:纖維素、多糖、聚乙烯醇和Triton X-100等。
(4)功能性添加劑:手性冠醚和環(huán)糊精等。
3、分離電壓:
分離電壓是控制柱效、分離度和遷移時間的重要因素。分離電壓與毛細(xì)管內(nèi)徑和長度及緩沖溶液濃度(離子強(qiáng)度)有關(guān),電壓的極值范圍因系統(tǒng)和組成而異。
當(dāng)柱長一定時,在一定電壓范圍內(nèi),電壓與粒子的遷移速度成線性關(guān)系。
當(dāng)電壓過高時,線性關(guān)系偏移,主要是由高電壓引起的焦耳熱造成的。電壓升高,產(chǎn)生的焦耳熱增多,在不能有效驅(qū)散所產(chǎn)生焦耳熱的情況下,柱溫會顯著升高,工作電流增大,柱效和分離度降低。除了采取有效的散熱措施外,選擇合適的條件,使在此條件下允許使用較高電壓,而不致產(chǎn)生過大的電流和過多的焦耳熱,是非常重要的。一般通過作I-V曲線來選擇體系的最優(yōu)分離電壓。
4、分離溫度:
毛細(xì)管的溫度不僅影響分離的重視性,而且影響分離效率。溫度選擇應(yīng)考慮熱效應(yīng)、分析重現(xiàn)性、分離效率和分離介質(zhì)對溫度的限制等因素。
溫度應(yīng)通過實驗確定。多數(shù)情況下,在20~30℃進(jìn)行電泳能獲得良好的分離效果。一些糖類樣品需要高于室溫的分離條件,一些樣品如蛋白質(zhì)等可能需要低于室溫的分離條件。
五、應(yīng)用:
CZE是CE最基本、應(yīng)用最廣的分離模式。
可分離蛋白質(zhì)、多肽和帶電荷的大小分子。
   
來源:http://www.fudizao.com
   
 
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